Асептика и антисептика в хирургии (стр. 1 )

УДК 616-089.165 ББК 54.5

Асептика и антисептика в хирургии/ Авторский коллектив:

А 90

В. В. Ходаков, Л. П. Ларионов, М. А. Ранцев, Ф. Н. Копылов, В. Ф. Голиков, И. А. Головин. - Екате­ринбург: Диамант,1994. - 152 с.

ISBN 5-8490-0049-6

В данном пособии представлена необходимая информация об внутригоспитальной инфекции. Изложены основы асептики и анти­септики, необходимые в деятельности врача и среднего медицинско­го персонала в лечебно-профилактических учреждениях. Даны поня­тия, виды и методика проведения дезинфекции, предстерилизационной очистки и собственно стерилизации в стационарах хирургичес­кого профиля.

Представлены различные методы и способы обработки рук хирурга, операционного поля, рекомендуемые антисептические ве­щества В пособии содержится необходимый информационный ма­териал по химиотерапевтическим средствам, способам их примене­ния, выделены принципы назначения антибиотиков, сульфаниламидных препаратов и препаратов, предназначенных для иммунотерапии и иммунопрофилактики. В приложениях представлены некоторые извлечения официальных документов Министерства здравоохране­ния, инструкции применения иммунных препаратов и таблицы для антибиотикотерапии

Рецензенты: М. И.Сахаров, профессор, д. м.н., председатель Областного общества хирургов;

З. Н. Кондрашова, профессор, д. м.н., зав. ка­федрой микробиологии УрГМИ; А. Б. Матве­ев, профессор, д. м.н., зав. кафедрой фармако­логии Астраханского мединститута

ISBN 5-8490-0049-6 © Уральский медицинский институт, 1994

РАЗДЕЛ 1. ХИРУРГИЧЕСКАЯ ИНФЕКЦИЯ

Под хирургической инфекцией понимают внедрение, раз­множение и распространение патогенных гноеродных микро­организмов, с последующим формированием гнойного очага в организме больного. Оценке роли микробного фактора в развитии инфекционного процесса всегда уделялось большое внимание, т. к. хорошо известно, что от вида микроба, вы­звавшего инфекционный процесс, зависит специфика течения последнего. Это положение особенно важно учитывать в на­стоящее время, когда произошли значительные изменения в этиологической структуре возбудителей инфекционных забо­леваний и гнойных хирургических инфекций в частности, и на первое место выдвинулась проблема условно-патогенных возбудителей (Тимаков В. Д., Петровская В. Г., 1977).

В настоящее время основными возбудителями гнойной инфекции являются стафилококки, грамотрицательные бак­терии рода Enterobactenacea, группа грамотрицательных не­ферментирующих бактерий, анаэробные бактерии.

Необходимо различать контаминацию (загрязнение) -попадание микроорганизмов в организм больного и инфекци­онный процесс - размножение и распространение микроорга­низмов, сопровождающиеся местными и общими клинически­ми симптомами. Контаминация - еще не начало инфекцион­ного процесса, т. к. для его возникновения необходим ряд фак­торов: преодоление защитных сил организма, наличие опре­деленной чувствительности организма к патогенному агенту, определенное количество микроорганизмов, их вирулентность и т. д.

Различают два вида хирургической инфекции: экзоген­ную и эндогенную. При экзогенной инфекции микроорганиз­мы попадают в организм человека через верхние дыхатель­ные пути, желудочно-кишечный тракт, поврежденные кожу и слизистые оболочки и т. д.

Эндогенная инфекция подразумевает распространение микроорганизмов из хронического, "дремлющего" очага

3

инфекции в самом организме через кровеносные и лимфатичес­кие сосуды.

Пути проникновения патогенных микроорганизмов в организм человека:

- контактный

- воздушно-капельный

- воздушно-пылевой

- имплантационный.

В условиях хирургического стационара основным путем является контактный (бытовой) - внесение возбудителей ин­фекции в организм человека через предметы, которые непос­редственно соприкасались с больным человеком. Инфицирование может происходить во время операции, при контакте раневой поверхности с нестерильным инструментарием, пере­вязочным материалом, с недостаточно хорошо обработанны­ми руками врача или медсестры, при неудовлетворительной изоляции раны от внешней среды и т. д.

Второе место по частоте занимают воздушно-капельный и воздушно-пылевой пути - попадание микроорганизмов, ад­сорбированных на частичках твердого вещества или в жид­костях с потоками воздуха на раненую поверхность или внутрь организма человека.

Имплантационный путь - это проникновение микроор­ганизмов, находящихся на поверхности или в толще матери­альных субстратов, при имплантации последних в организм человека, например, при некачественно проведенной стерили­зации шовного материала, с растворами для инъекционного введения и т. д. Некоторые авторы считают, что имплантаци­онный путь является разновидностью контактного и в то же время отдельно выделяют инъекционный путь передачи ин­фекции.

В настоящее время особую актуальность приобрел во­прос о внутригоспитальной инфекции. Внутригоспитальная (нозокомиальная) инфекция развивается у больных, находя­щихся в стационаре, вследствие контаминации штаммами, рас­пространенными в лечебном учреждении. В проблеме борьбы

4

с внутригоспитальной инфекцией прежде всего заслуживают внимания вопросы установления основных источников и пу­тей распространения микроорганизмов в стационаре. При внутригоспитальной инфекции в подавляющем большинстве случаев инфицирование происходит из экзогенных источни­ков, в основном воздушно-пылевым и контактным путями передачи. Источниками инфицирования при этом могут слу­жить персонал, больные с гнойными осложнениями (заболе­ваниями), недостаточно дезинфицированные предметы ухода за больными, инструментарий, перевязочный материал и др. Особенностью госпитальных штаммов микроорганизмов яв­ляется их высокая устойчивость в окружающей среде. Они продолжительное время могут сохранять жизнеспособность и вирулентность на различных предметах, непосредственно со­прикасающихся с больным. Среди возбудителей внутригос­питальной инфекции в последние годы значительно возрос удельный вес грамотрицательных микроорганизмов семейст­ва Enterobacteriacea и Pseudomonas, а также анаэробной не-клостридиальной флоры.

Различают два основных пути профилактики хирурги­ческой инфекции:

1. Предупреждение попадания возбудителей инфекции в организм человека при хирургических вмешательствах и дру­гих медицинских манипуляциях. Это профилактика первич­ной инфекции.

2. Предупреждение последующей контаминации в про­цессе дальнейшего лечения. Это профилактика вторичной ин­фекции. Профилактика распространения хирургической ин­фекции достигается строгим соблюдением методов асептики и антисептики.

5

6

РАЗДЕЛ 2. АСЕПТИКА

Асептика ("а"- не, "septicos"- гнойный) - комплекс мероприятий, направленных на профилактику проникнове­ния микроорганизмов в рану, ткани, органы и полости орга­низма больного (раненого) при хирургических операциях, ма­нипуляциях и перевязках, диагностических и лечебных проце­дурах.

Асептика предусматривает выполнение следующих ос­новных правил:

- дезинфекции, предстерилизационной очистки и соб­ственно стерилизации инструментов, приборов, перевязочно­го материала и пр., которые в дальнейшем будут соприка­саться с раневой поверхностью;

- специальной обработки рук врача, медсестры, поверхности операционного поля;

- соблюдения особых правил и приемов работы при вы­полнении операций, манипуляций, диагностических проце­дур и т. д.;

- осуществления специальных санитарно-гигиенических и организационных мероприятий в лечебно-профилактичес­ких учреждениях, предусмотренных приказом МЗ № 720 (см. Приложение).

Дезинфекция (обеззараживание) - (франц. "des" означающее удаление, уничтожение чего-либо; лат "inficere" -заражать, портить, отравлять) - удаление и уничтожение ве­гетативных форм микроорганизмов во внешней среде путем воздействия на них физическими и химическими факторами.

Дезинфекция предотвращает размножение и распростра­нение микроорганизмов во внешней среде, заражение пациен­тов и медицинского персонала. В хирургии дезинфекции под­вергаются предметы и материалы, использованные при опе­рациях и манипуляциях (особенно у "гнойных" и инфекцион­ных больных), а также имевшие контакт с биологическими жидкостями и выделениями человека. Дезинфекции, без пос­ледующей стерилизации, подвергаются все изделия и матери­алы, которые при последующем их использовании не будут иметь контакта с раневой поверхностью, кровью и другими

7

биологическими жидкостями организма, например, постель­ное белье, одежда, подкладные судна и т. д. Все предметы и материалы, соприкасающиеся при их применении с раневой поверхностью, биологическими жидкостями организма, сли­зистыми оболочками, подвергаются предстерилизационной очистке с последующим проведением стерилизации.

Стандартные методы дезинфекции и порядок их осущес­твления определены ОСТ 42-21-2-85 МЗ СССР.

Дезинфекция изделий, помещений медицинского назна­чения достигается применением растворов химических веществ (химический метод), а также кипячением, использованием го­рячего пара и воздуха, УЗ-волн, и т. д. (физический метод).

Химический метод дезинфекции. Препараты, применяе­мые для проведения химической дезинфекции, подразделяют­ся на три группы:

1. Средства мягкой дезинфекции (хлорамин, роккал, дихлор-1, гибитан, первомур и т. д.). Применяются для дезинфек­ции кожи человека, хирургических инструментов, а также не­значительно загрязненного белья и одежды. Они не должны вызывать дерматитов или раздражения кожных покровов, ал­лергических реакций, не должны обладать неприятным запа­хом и повреждать обрабатываемые материалы.

2. Средства грубой дезинфекции (хлорная известь, ли­зол, крезол, фенол, крезолит и т. д.). Пригодны для обработки сильно загрязненных материалов, на которых имеется боль­шое количество органических веществ. Они пригодны для де­зинфекции мебели, раковин, подкладных суден, мочеприемников, помещений, обуви, а также выделений человека.

3. Средства для дезинфекции воздуха в закрытых поме­щениях и поверхностей, находящихся там предметов. Имеют ограниченное применение в лечебно-профилактических учреж­дениях.

Наиболее широко используемые средства мягкой хими­ческой дезинфекции приведены в табл. 1.

8

Таблица 1 Химическая дезинфекция изделий медицинского назначения

Дезинфектант Хлорамин

Темп

не ме концент­рация 1,0 5,0 3,0

ература нее 18°С экспозици (мин) 30 240 60

Применение я

Стекло, корро-зионно-стойкий металл, резина, полимерные материалы

Условия

Полное погруже­ние изделий в раствор или про-тирание салфет­ками из бязи двукратно с ин-ваппм 15 мин

Перекись водорода

3,0 3,0 4.0

80 180 90

—

Формалин (по формаль­дегиду)

3,0 10,0 3,0

30 60 30

—

—

Дезоксон-1

0,1 0.1

15

30

—

—

Гибитан

2,5

30

—

—

Сульфохло-рантин

0,1 1,0 0,2

Стекло, коррози - / онностойкий металл, резина, i полимерные материалы

Двухкратное п ротирание сал-)еткой из марли или бязи с интер­валом 15 мин

Дихлор-1

1,0 3,0 3,0

:

—

—

Хлорцин

0,5 3,0 1,0

Стекло, коррози-онностойкий метащ резина, полимерные материалы

Полное п, погружение s изделий в раствор

Дезам

0.25 0,5

-

—

—

Перекись водорода с 0,5% р/р CMC "Прогресс", "Астра' "Лотос". "Айна"

3,0 3,0 4,0

-

—

—

Нейтральный гипохлорит кальц

0,25

ИЯ

1,0

—

—

9

Примечания:

1. Режим дезинфекции для каждого препарата дан в трех вариантах:

а) должен применяться при гнойных заболеваниях, кишечных и воздушно-капельных инфекциях бактериаль­ной и вирусной этиологии (грипп, аденовирусная инфек­ция и пр.). Гибитан применяется только при инфекции бактериальной этиологии;

б) при туберкулезе;

в) при вирусном гепатите;

2. После дезинфекции способом погружения изделия должны быть промыты в проточной воде до полного уда­ления запаха дезинфектанта.

3. Дезинфицирующий раствор должен применяться только однократно'

Метод дезинфекции кипячением. Процесс дезинфекции должен осуществляться в дезинфекционных кипятильниках. Дистиллированную воду нагревают до 98-100 °С при экспозиции 30-45 мин. Может быть использована дистиллированная вода с добавлением гидрокарбоната натрия до получения 2% раствора. Добавление соды предохраняет инструменты от ржавчины и окисления, температура кипения раствора повы­шается до 102-104 °С, а время экспозиции уменьшается до 15 мин. Обрабатываемые изделия, особенно коррозионно-нестойкие, погружают в предварительно прокипяченную горячую воду, т. к. при кипении из воды удаляется значительная часть кислорода, что и предохраняет изделия от образования ржав­чины на их поверхности. Метод используется для дезинфек­ции изделий из стекла, резины,, синтетических материалов, коррозионно-стойкого металла и т. д.

Метод дезинфекции текучим паром. Дезинфекция осу­ществляется в дезинфекционной камере (аппарат Коха). Ис­пользуется насыщенный текучий водяной пар при избыточ­ном давлении 0,5 kfc/cm'h температуре 110 °С. Время экспози­ции 20-25 минут. Рекомендуется для изделий из стекла, метал­ла, резины и термостойких полимеров, которые предваритель­но помещают в различные виды стерилизационных металли­ческих коробок (биксы Шиммельбуша).

Горячевоздушный метод дезинфекции. Дезинфекция проводится

10

в воздушных иери. чша юрах по особому режиму. Ис­пользуется сухой горячий воздух при температуре 120 °С. Вре­мя экспозиции - 45 мин. Рекомендуется для изделий из стекла и металла. Дезинфекция проводится на открытых металли­ческих ЛО-1КЯХ.

Метод дезинфекции с использованием ультразвуковых волн. Механические колебания с частотой oт 2*104 до 2"108 колеба­ний в секунду, не воспринимаемые слуховым аппаратом чело­века, называются ультразвуком. В каждом участке среды, куда проникает yльтpaзвук, периодически происходит сжатие и раз­ряжение. Ультразвуковые волны, распространяющиеся в жид­кости, вызывают образование микроскопических полостей. Возникшая полость быстро закрывается под влиянием после­дующего сжатия. Такое явление называется кавитацией. Про­должительность жизни кавитационного пузырька coизмерима с периодом звукового колебания. Находящиеся в кавитационной полости молекулы и атомы газов подвергаются про­цессам диссоциации и ионизации. При кавитации создается большая разница в давлении и происходит разрушение мик­робной оболочки (клеточной мембраны). При использовании ультразвука для дезинфекции воды бактерицидный эффект достигается с большим трудом. Бактерицидное действие уль­тразвука увеличивается при добавлении в воду бактерицид­ных веществ, например фенола (0,25-0,5% раствор). Воздейст­вие ультразвуковых волн может быть использовано для меха­нической очистки загрязненного материала и обработки рук химическими антисептиками перед операцией.

Предстерилизационная очистка. Основной смысл предстерилизационной очистки заключается в повы­шении эффективности и надежности последующих методов стерилизации. Предстерилизационной очистке подвергаются изделия и материалы, подлежащие в дальнейшем стерилиза­ции. Она имеет целью удаление белковых, жировых, консер­вирующих загрязнений, а также остатков лекарственных ве­ществ. Предстерилизационная очистка проводится ручным или механизированным способом в специальных моющих рас­творах (табл. 2).

11

Таблица 2 Методика проведения предстерилизационной очистки

Процессы при проведении очистки

Замачивание в мо­ющем растворе при полном погружении изделия: CMC "Биолот" CMC' "Прогресс", "Астра", "Анна" "Лотос"

Темпера­тура, °С

40 50

Экспози­ция, мин

15 15

Применяемое оборудование

Бачок, ванна, раковина

Мойка каждо! о изделия в моющем растворе при помощи ерша или ватно-марлевого тампона Ополаскивание под проточной водой при применении: CMC "Биолот" CMC "Астра", "Айна", "Лотос" ; CMC' "Прогресс"

-

0,5

3,0

10,0 5,0

Ванна, раковина с устройством для струйной подачи воды

Ополаскивание дистиллированной во­дой

-

0,5

Ванна, бачок

Сушка сухим го­рячим воздухом

85

До полного исчезнове­ния влаги

Сушильный шкаф

Примечания: I. Температура раствора в процессе мойки не поддержи­вается. 2. Моющий раствор допускается применять до загрязнения (появление розового окрашивания свидетельствует о загрязнении раствора кровью). Мо­ющий раствор перекиси водорода с синтетическими моющими средствами (CMC) можно использовать в течение суток, если цвет раствора не изменился. Неизмененный раствор можно подогревать до 6 раз, в процессе подогрева концентрация перекиси водорода существенно не изменится.

12

Таблица 3

Приготовление моющего раствора для предстерилизационной очистки

Наименование компонентов

Количество компонентов для приготовления 1 дм' мoющего раствора

Применение

CMC "Биолот" Вода, см3

3 997

Для механизирован­ной очистки (струй­ный метод, ершева-ние)

CMC "Биолот",г Вода, см3

1, 998,5

При механизирован­ной очистке ротацион­ным методом

CMC' "Биолот",г Вода, см3

995

При ручной очистке

Р-р Н2О2 см3 С'МС': " Прогресс" "Айна", "Астра", "Лотос",г Вода. см3

17

5 978

При механизирован­ной (все методы) и ручной очистке

CMC "Лотос",г Вода, см3

5 995

При использовании ультразвука

13

Механизированная очистка осуществляется струйным, ротационным методами и с применением ультразвука в спе­циальных моющих растворах, рекомендуемых ОСТ 42-21-2—85. Механизированный способ предстерилизационной очистки применяется в крупных централизованных стерилизационных отделениях (ЦСО). При проведении предстерилиза­ционной очистки персонал в обязательном порядке использу­ет средства защиты - резиновые перчатки, фартуки и т. д.

Методика и последовательность проведения предстери­лизационной очистки представлены в табл. 2.

Приготовление различных моющих растворов для пред­стерилизационной очистки описано в табл. 3.

Для предстерилизационной очистки допускается приме­нение медицинской перекиси водорода. Приведенные коли­чества перекиси водорода для приготовления моющего рас­твора рассчитаны для раствора с концентрацией 27,5%. При использовании коррозионно-нестойких металлических инстру­ментов последние после использования их в ходе операции или манипуляции, с последующей дезинфекцией, могут быть погружены в 1% раствор бензоната натрия (ингибитор кор­розии) при температуре 20 °С. Время экспозиции 60 мин. Пос­ле этого инструмент ополаскивается проточной водой в тече­ние 30 с. В случае необходимости инструмент может оста­ваться в растворе ингибитора коррозии до 7 ч.

Для контроля качества предстерилизационной очистки применяются две методики:

1. Контроль наличия остатков CMC производится при помощи фенолфталеиновой пробы. На предмет наносится 1—2 капли 1% спиртового раствора фенолфталеина. Появле­ние розового окрашивания свидетельствует о наличии остат­ков CMC.

2. Контроль наличия остатков крови. Наиболее распрос­траненной является азопирамовая проба. Исследуемое изде­лие обрабатывается рабочим раствором (азопирам с 3% рас­твором перекиси водорода в соотношении 1:1). При наличии остатков крови появляется сиреневое окрашивание. Реже ис­пользуется бензидиновая проба: на предмет наносится 2—3 капли 1% раствора солянокислого бензидина и затем 2—3

14

капли 3% paствopa перекиси водорода. Появление сине-зеле­ного окрашивания свидетельствует о положительном резуль­тате.

При положительных результатах перечисленных проб инструментарий и материал должны вновь пройти полный цикл предстерилизационной обработки, а в некоторых случаях и дезинфекцию.

Стерилизация - полное освобождение какого-либо вещества или предмета от вегетативных форм и спор микро­организмов путем воздействия на них физических и химичес­ких факторов. В хирургии стерилизуют все предметы и изде­лия (аппараты, приборы, инструментарий, материал и т. д.), г соприкасающиеся в процессе их использования с раневой по­верхностью, слизистыми оболочками, биологическими жидкостями, и препараты, предназначенные для парентерально­го введения, а также препараты для перорального введения детям раннего возраста и т. д.

К применяемым для стерилизации методам и средствам предъявляются строгие требования. Они должны обладать высокой эффективностью и одновременно не повреждать сте­рилизуемых предметов и материалов. Существуют физичес­кие и химические методы стерилизации:

Из за большого объема этот материал размещен на нескольких страницах:
1 2 3 4 5 6 7 8 9
Направления медицины в архивах:

Проекты по теме списка: