Асептика и антисептика в хирургии

УДК 616-089.165 ББК 54.5

Асептика и антисептика в хирургии/ Авторский коллектив:

А 90

В.В. Ходаков, Л.П. Ларионов, М.А. Ранцев, Ф.Н. Копылов, В.Ф. Голиков, И.А. Головин. - Екате­ринбург: Диамант,1994. - 152 с.

ISBN 5-8490-0049-6

В данном пособии представлена необходимая информация об внутригоспитальной инфекции. Изложены основы асептики и анти­септики, необходимые в деятельности врача и среднего медицинско­го персонала в лечебно-профилактических учреждениях. Даны поня­тия, виды и методика проведения дезинфекции, предстерилизационной очистки и собственно стерилизации в стационарах хирургичес­кого профиля.

Представлены различные методы и способы обработки рук хирурга, операционного поля, рекомендуемые антисептические ве­щества В пособии содержится необходимый информационный ма­териал по химиотерапевтическим средствам, способам их примене­ния, выделены принципы назначения антибиотиков, сульфаниламидных препаратов и препаратов, предназначенных для иммунотерапии и иммунопрофилактики. В приложениях представлены некоторые извлечения официальных документов Министерства здравоохране­ния, инструкции применения иммунных препаратов и таблицы для антибиотикотерапии

Рецензенты: М.И.Сахаров, профессор, д.м.н., председатель Областного общества хирургов;

^ З.Н. Кондрашова, профессор, д.м.н., зав. ка­федрой микробиологии УрГМИ; А.Б. Матве­ев, профессор, д.м.н., зав. кафедрой фармако­логии Астраханского мединститута

ISBN 5-8490-0049-6 © Уральский медицинский институт, 1994

^ РАЗДЕЛ 1. ХИРУРГИЧЕСКАЯ ИНФЕКЦИЯ

Под хирургической инфекцией понимают внедрение, раз­множение и распространение патогенных гноеродных микро­организмов, с последующим формированием гнойного очага в организме больного. Оценке роли микробного фактора в развитии инфекционного процесса всегда уделялось большое внимание, т.к. хорошо известно, что от вида микроба, вы­звавшего инфекционный процесс, зависит специфика течения последнего. Это положение особенно важно учитывать в на­стоящее время, когда произошли значительные изменения в этиологической структуре возбудителей инфекционных забо­леваний и гнойных хирургических инфекций в частности, и на первое место выдвинулась проблема условно-патогенных возбудителей (Тимаков В.Д., Петровская В.Г., 1977).

В настоящее время основными возбудителями гнойной инфекции являются стафилококки, грамотрицательные бак­терии рода Enterobactenacea, группа грамотрицательных не­ферментирующих бактерий, анаэробные бактерии.

Необходимо различать контаминацию (загрязнение) -попадание микроорганизмов в организм больного и инфекци­онный процесс - размножение и распространение микроорга­низмов, сопровождающиеся местными и общими клинически­ми симптомами. Контаминация - еще не начало инфекцион­ного процесса, т.к. для его возникновения необходим ряд фак­торов: преодоление защитных сил организма, наличие опре­деленной чувствительности организма к патогенному агенту, определенное количество микроорганизмов, их вирулентность и т.д.

Различают два вида хирургической инфекции: экзоген­ную и эндогенную. При экзогенной инфекции микроорганиз­мы попадают в организм человека через верхние дыхатель­ные пути, желудочно-кишечный тракт, поврежденные кожу и слизистые оболочки и т.д.

Эндогенная инфекция подразумевает распространение микроорганизмов из хронического, "дремлющего" очага

3

инфекции в самом организме через кровеносные и лимфатичес­кие сосуды.

Пути проникновения патогенных микроорганизмов в организм человека:

- контактный

- воздушно-капельный

- воздушно-пылевой

- имплантационный.

В условиях хирургического стационара основным путем является контактный (бытовой) - внесение возбудителей ин­фекции в организм человека через предметы, которые непос­редственно соприкасались с больным человеком. Инфицирование может происходить во время операции, при контакте раневой поверхности с нестерильным инструментарием, пере­вязочным материалом, с недостаточно хорошо обработанны­ми руками врача или медсестры, при неудовлетворительной изоляции раны от внешней среды и т.д.

Второе место по частоте занимают воздушно-капельный и воздушно-пылевой пути - попадание микроорганизмов, ад­сорбированных на частичках твердого вещества или в жид­костях с потоками воздуха на раненую поверхность или внутрь организма человека.

Имплантационный путь - это проникновение микроор­ганизмов, находящихся на поверхности или в толще матери­альных субстратов, при имплантации последних в организм человека, например, при некачественно проведенной стерили­зации шовного материала, с растворами для инъекционного введения и т.д. Некоторые авторы считают, что имплантаци­онный путь является разновидностью контактного и в то же время отдельно выделяют инъекционный путь передачи ин­фекции.

В настоящее время особую актуальность приобрел во­прос о внутригоспитальной инфекции. Внутригоспитальная (нозокомиальная) инфекция развивается у больных, находя­щихся в стационаре, вследствие контаминации штаммами, рас­пространенными в лечебном учреждении. В проблеме борьбы

4

с внутригоспитальной инфекцией прежде всего заслуживают внимания вопросы установления основных источников и пу­тей распространения микроорганизмов в стационаре. При внутригоспитальной инфекции в подавляющем большинстве случаев инфицирование происходит из экзогенных источни­ков, в основном воздушно-пылевым и контактным путями передачи. Источниками инфицирования при этом могут слу­жить персонал, больные с гнойными осложнениями (заболе­ваниями), недостаточно дезинфицированные предметы ухода за больными, инструментарий, перевязочный материал и др. Особенностью госпитальных штаммов микроорганизмов яв­ляется их высокая устойчивость в окружающей среде. Они продолжительное время могут сохранять жизнеспособность и вирулентность на различных предметах, непосредственно со­прикасающихся с больным. Среди возбудителей внутригос­питальной инфекции в последние годы значительно возрос удельный вес грамотрицательных микроорганизмов семейст­ва Enterobacteriacea и Pseudomonas, а также анаэробной не-клостридиальной флоры.

Различают два основных пути профилактики хирурги­ческой инфекции:

1. Предупреждение попадания возбудителей инфекции в организм человека при хирургических вмешательствах и дру­гих медицинских манипуляциях. Это профилактика первич­ной инфекции.

2. Предупреждение последующей контаминации в про­цессе дальнейшего лечения. Это профилактика вторичной ин­фекции. Профилактика распространения хирургической ин­фекции достигается строгим соблюдением методов асептики и антисептики.

5





6

^ РАЗДЕЛ 2. АСЕПТИКА

Асептика ("а"- не, "septicos"- гнойный) - комплекс мероприятий, направленных на профилактику проникнове­ния микроорганизмов в рану, ткани, органы и полости орга­низма больного (раненого) при хирургических операциях, ма­нипуляциях и перевязках, диагностических и лечебных проце­дурах.

Асептика предусматривает выполнение следующих ос­новных правил:

- дезинфекции, предстерилизационной очистки и соб­ственно стерилизации инструментов, приборов, перевязочно­го материала и пр., которые в дальнейшем будут соприка­саться с раневой поверхностью;

- специальной обработки рук врача, медсестры, поверхности операционного поля;

- соблюдения особых правил и приемов работы при вы­полнении операций, манипуляций, диагностических проце­дур и т.д.;

- осуществления специальных санитарно-гигиенических и организационных мероприятий в лечебно-профилактичес­ких учреждениях, предусмотренных приказом МЗ № 720 (см. Приложение).

Дезинфекция (обеззараживание) - (франц. "des" означающее удаление, уничтожение чего-либо; лат "inficere" -заражать, портить, отравлять) - удаление и уничтожение ве­гетативных форм микроорганизмов во внешней среде путем воздействия на них физическими и химическими факторами.

Дезинфекция предотвращает размножение и распростра­нение микроорганизмов во внешней среде, заражение пациен­тов и медицинского персонала. В хирургии дезинфекции под­вергаются предметы и материалы, использованные при опе­рациях и манипуляциях (особенно у "гнойных" и инфекцион­ных больных), а также имевшие контакт с биологическими жидкостями и выделениями человека. Дезинфекции, без пос­ледующей стерилизации, подвергаются все изделия и матери­алы, которые при последующем их использовании не будут иметь контакта с раневой поверхностью, кровью и другими

7

биологическими жидкостями организма, например, постель­ное белье, одежда, подкладные судна и т.д. Все предметы и материалы, соприкасающиеся при их применении с раневой поверхностью, биологическими жидкостями организма, сли­зистыми оболочками, подвергаются предстерилизационной очистке с последующим проведением стерилизации.

Стандартные методы дезинфекции и порядок их осущес­твления определены ОСТ 42-21-2-85 МЗ СССР.

Дезинфекция изделий, помещений медицинского назна­чения достигается применением растворов химических веществ (химический метод), а также кипячением, использованием го­рячего пара и воздуха, УЗ-волн, и т.д. (физический метод).

^ Химический метод дезинфекции. Препараты, применяе­мые для проведения химической дезинфекции, подразделяют­ся на три группы:

1. Средства мягкой дезинфекции (хлорамин, роккал, дихлор-1, гибитан, первомур и т.д.). Применяются для дезинфек­ции кожи человека, хирургических инструментов, а также не­значительно загрязненного белья и одежды. Они не должны вызывать дерматитов или раздражения кожных покровов, ал­лергических реакций, не должны обладать неприятным запа­хом и повреждать обрабатываемые материалы.

2. Средства грубой дезинфекции (хлорная известь, ли­зол, крезол, фенол, крезолит и т.д.). Пригодны для обработки сильно загрязненных материалов, на которых имеется боль­шое количество органических веществ. Они пригодны для де­зинфекции мебели, раковин, подкладных суден, мочеприемников, помещений, обуви, а также выделений человека.

3. Средства для дезинфекции воздуха в закрытых поме­щениях и поверхностей, находящихся там предметов. Имеют ограниченное применение в лечебно-профилактических учреж­дениях.

Наиболее широко используемые средства мягкой хими­ческой дезинфекции приведены в табл. 1.

8

^ Таблица 1 Химическая дезинфекция изделий медицинского назначения

Дезинфектант Хлорамин


Темп

не ме концент­рация 1,0 5,0 3,0


ература нее 18°С экспозици (мин) 30 240 60


Применение я

Стекло, корро-зионно-стойкий металл, резина, полимерные материалы


Условия

Полное погруже­ние изделий в раствор или про-тирание салфет­ками из бязи двукратно с ин-ваппм 15 мин


Перекись водорода


3,0 3,0 4.0


80 180 90


—




Формалин (по формаль­дегиду)


3,0 10,0 3,0


30 60 30


—


—


Дезоксон-1


0,1 0.1


15

30


—


—


Гибитан


2,5


30


—


—


Сульфохло-рантин


0,1 1,0 0,2




Стекло, коррози- / онностойкий металл, резина, i полимерные материалы


Двухкратное п ротирание сал-)еткой из марли или бязи с интер­валом 15 мин


Дихлор-1


1,0 3,0 3,0


:


—


—


Хлорцин


0,5 3,0 1,0




Стекло, коррози-онностойкий метащ резина, полимерные материалы


Полное п, погружение s изделий в раствор


Дезам


0.25 0,5


-


—


—


Перекись водорода с 0,5% р/р CMC "Прогресс", "Астра' "Лотос". "Айна"


3,0 3,0 4,0


-


—


—


Нейтральный гипохлорит кальц


0,25

ИЯ

1,0




—


—



9

Примечания:

1. Режим дезинфекции для каждого препарата дан в трех вариантах:

а) должен применяться при гнойных заболеваниях, кишечных и воздушно-капельных инфекциях бактериаль­ной и вирусной этиологии (грипп, аденовирусная инфек­ция и пр.). Гибитан применяется только при инфекции бактериальной этиологии;

б) при туберкулезе;

в) при вирусном гепатите;

2. После дезинфекции способом погружения изделия должны быть промыты в проточной воде до полного уда­ления запаха дезинфектанта.

3. Дезинфицирующий раствор должен применяться только однократно'

^ Метод дезинфекции кипячением. Процесс дезинфекции должен осуществляться в дезинфекционных кипятильниках. Дистиллированную воду нагревают до 98-100 °С при экспозиции 30-45 мин. Может быть использована дистиллированная вода с добавлением гидрокарбоната натрия до получения 2% раствора. Добавление соды предохраняет инструменты от ржавчины и окисления, температура кипения раствора повы­шается до 102-104 °С, а время экспозиции уменьшается до 15 мин. Обрабатываемые изделия, особенно коррозионно-нестойкие, погружают в предварительно прокипяченную горячую воду, т.к. при кипении из воды удаляется значительная часть кислорода, что и предохраняет изделия от образования ржав­чины на их поверхности. Метод используется для дезинфек­ции изделий из стекла, резины,, синтетических материалов, коррозионно-стойкого металла и т.д.

^ Метод дезинфекции текучим паром. Дезинфекция осу­ществляется в дезинфекционной камере (аппарат Коха). Ис­пользуется насыщенный текучий водяной пар при избыточ­ном давлении 0,5 kfc/cm'h температуре 110 °С. Время экспози­ции 20-25 минут. Рекомендуется для изделий из стекла, метал­ла, резины и термостойких полимеров, которые предваритель­но помещают в различные виды стерилизационных металли­ческих коробок (биксы Шиммельбуша).

^ Горячевоздушный метод дезинфекции. Дезинфекция проводится

10

в воздушных иери.чша юрах по особому режиму. Ис­пользуется сухой горячий воздух при температуре 120 °С. Вре­мя экспозиции - 45 мин. Рекомендуется для изделий из стекла и металла. Дезинфекция проводится на открытых металли­ческих ЛО-1КЯХ.

^ Метод дезинфекции с использованием ультразвуковых волн. Механические колебания с частотой oт 2*104 до 2"108 колеба­ний в секунду, не воспринимаемые слуховым аппаратом чело­века, называются ультразвуком. В каждом участке среды, куда проникает yльтpaзвук, периодически происходит сжатие и раз­ряжение. Ультразвуковые волны, распространяющиеся в жид­кости, вызывают образование микроскопических полостей. Возникшая полость быстро закрывается под влиянием после­дующего сжатия. Такое явление называется кавитацией. Про­должительность жизни кавитационного пузырька coизмерима с периодом звукового колебания. Находящиеся в кавитационной полости молекулы и атомы газов подвергаются про­цессам диссоциации и ионизации. При кавитации создается большая разница в давлении и происходит разрушение мик­робной оболочки (клеточной мембраны). При использовании ультразвука для дезинфекции воды бактерицидный эффект достигается с большим трудом. Бактерицидное действие уль­тразвука увеличивается при добавлении в воду бактерицид­ных веществ, например фенола (0,25-0,5% раствор). Воздейст­вие ультразвуковых волн может быть использовано для меха­нической очистки загрязненного материала и обработки рук химическими антисептиками перед операцией.

^ Предстерилизационная очистка. Основной смысл предстерилизационной очистки заключается в повы­шении эффективности и надежности последующих методов стерилизации. Предстерилизационной очистке подвергаются изделия и материалы, подлежащие в дальнейшем стерилиза­ции. Она имеет целью удаление белковых, жировых, консер­вирующих загрязнений, а также остатков лекарственных ве­ществ. Предстерилизационная очистка проводится ручным или механизированным способом в специальных моющих рас­творах (табл. 2).

11

^ Таблица 2 Методика проведения предстерилизационной очистки

Процессы при проведении очистки

Замачивание в мо­ющем растворе при полном погружении изделия: CMC "Биолот" CMC' "Прогресс", "Астра", "Анна" "Лотос"


Темпера­тура, °С

40 50


Экспози­ция, мин

15 15


Применяемое оборудование

Бачок, ванна, раковина


Мойка каждо!о изделия в моющем растворе при помощи ерша или ватно-марлевого тампона Ополаскивание под проточной водой при применении: CMC "Биолот" CMC "Астра", "Айна", "Лотос" ; CMC' "Прогресс"


-


0,5

3,0

10,0 5,0


Ванна, раковина с устройством для струйной подачи воды


Ополаскивание дистиллированной во­дой


-


0,5


Ванна, бачок


Сушка сухим го­рячим воздухом


85


До полного исчезнове­ния влаги


Сушильный шкаф



Примечания: I. Температура раствора в процессе мойки не поддержи­вается. 2. Моющий раствор допускается применять до загрязнения (появление розового окрашивания свидетельствует о загрязнении раствора кровью). Мо­ющий раствор перекиси водорода с синтетическими моющими средствами (CMC) можно использовать в течение суток, если цвет раствора не изменился. Неизмененный раствор можно подогревать до 6 раз, в процессе подогрева концентрация перекиси водорода существенно не изменится.

12

^ Таблица 3

Приготовление моющего раствора для предстерилизационной очистки

Наименование компонентов


Количество компонентов для приготовления 1 дм' мoющего раствора


Применение


CMC "Биолот" Вода,см3


3 997


Для механизирован­ной очистки (струй­ный метод, ершева-ние)


CMC "Биолот",г Вода,см3


1, 998,5


При механизирован­ной очистке ротацион­ным методом


CMC' "Биолот",г Вода,см3


995


При ручной очистке


Р-р Н2О2 см3 С'МС': " Прогресс" "Айна", "Астра", "Лотос",г Вода.см3


17

5 978


При механизирован­ной (все методы) и ручной очистке


CMC "Лотос",г Вода,см3


5 995


При использовании ультразвука



13

Механизированная очистка осуществляется струйным, ротационным методами и с применением ультразвука в спе­циальных моющих растворах, рекомендуемых ОСТ 42-21-2—85. Механизированный способ предстерилизационной очистки применяется в крупных централизованных стерилизационных отделениях (ЦСО). При проведении предстерилиза­ционной очистки персонал в обязательном порядке использу­ет средства защиты - резиновые перчатки, фартуки и т.д.

Методика и последовательность проведения предстери­лизационной очистки представлены в табл. 2.

Приготовление различных моющих растворов для пред­стерилизационной очистки описано в табл. 3.

Для предстерилизационной очистки допускается приме­нение медицинской перекиси водорода. Приведенные коли­чества перекиси водорода для приготовления моющего рас­твора рассчитаны для раствора с концентрацией 27,5%. При использовании коррозионно-нестойких металлических инстру­ментов последние после использования их в ходе операции или манипуляции, с последующей дезинфекцией, могут быть погружены в 1% раствор бензоната натрия (ингибитор кор­розии) при температуре 20 °С. Время экспозиции 60 мин. Пос­ле этого инструмент ополаскивается проточной водой в тече­ние 30 с. В случае необходимости инструмент может оста­ваться в растворе ингибитора коррозии до 7 ч.

Для контроля качества предстерилизационной очистки применяются две методики:

1. Контроль наличия остатков CMC производится при помощи фенолфталеиновой пробы. На предмет наносится 1—2 капли 1% спиртового раствора фенолфталеина. Появле­ние розового окрашивания свидетельствует о наличии остат­ков CMC.

2. Контроль наличия остатков крови. Наиболее распрос­траненной является азопирамовая проба. Исследуемое изде­лие обрабатывается рабочим раствором (азопирам с 3% рас­твором перекиси водорода в соотношении 1:1). При наличии остатков крови появляется сиреневое окрашивание. Реже ис­пользуется бензидиновая проба: на предмет наносится 2—3 капли 1% раствора солянокислого бензидина и затем 2—3

14

капли 3% paствopa перекиси водорода. Появление сине-зеле­ного окрашивания свидетельствует о положительном резуль­тате.

При положительных результатах перечисленных проб инструментарий и материал должны вновь пройти полный цикл предстерилизационной обработки, а в некоторых случаях и дезинфекцию.

Стерилизация - полное освобождение какого-либо вещества или предмета от вегетативных форм и спор микро­организмов путем воздействия на них физических и химичес­ких факторов. В хирургии стерилизуют все предметы и изде­лия (аппараты, приборы, инструментарий, материал и т.д.), г соприкасающиеся в процессе их использования с раневой по­верхностью, слизистыми оболочками, биологическими жидкостями, и препараты, предназначенные для парентерально­го введения, а также препараты для перорального введения детям раннего возраста и т.д.

К применяемым для стерилизации методам и средствам предъявляются строгие требования. Они должны обладать высокой эффективностью и одновременно не повреждать сте­рилизуемых предметов и материалов. Существуют физичес­кие и химические методы стерилизации:

физические Химические:

- паровой, - газовый, - горячевоздушный, - растворами - радиационный, химических препаратов - инфракрасное, ультрафиолетовое излучение

Наибольшее применение в хирургической практике на-шли методы термической стерилизации - паровой и горяче­воздушный. Воздействие температуры свыше 56 °С приводит к денатурации белка живых организмов. При более высоких температурах происходит гибель или существенное наруше­ние жизнедеятельности многих микроорганизмов. Температура 120 °С убивает большинство микроорганизмов. При температуре 120 °С и выше погибают спорообразующие формы микроорганизмов.

^ Паровой метод стерилизации. Использование пара под

15

давлением является основным методом термической стерили­зации, применяемым на сегодняшний день в медицинской прак­тике. При этом стерилизующим агентом является водяной на­сыщенный пар под давлением от 0,5 до 2,0 кгс/см2 и темпера­туре 110-132 °С при экспозиции 15-60 мин. Давление пара и температура находятся к корреляционной зависимости. Со­ответственно с достигаемой температурой изменяется и время экспозиции. Противомикробное действие этого метода обус­ловлено непосредственным воздействием на микробные клет­ки горячего пара при активном проникновении его между стерилизующимися объектами и внутрь капиллярно-порис­тых материалов. Недостатком парового метода является ув­лажнение стерилизуемых изделий при конденсации пара. Это может привести к коррозионным изменениям нестойких ме­таллов, и, кроме того, ухудшает условия хранения простерилизованных объектов, повышая возможность их вторичного обсеменения микробной флорой.

На практике используются два режима стерилизации:

РЕЖИМ I (Давление 2 кгс/см2, температура 132 °С, эк­спозиция 20 мин).

Применяется для стерилизации изделий из стекла, коррозионно-стойкого металла, текстильных изделий.

РЕЖИМ II (Давление 1,1 кгс/см2, температура 120 °С, экспозиция 45 мин).

Применяется для стерилизации изделий из тонкой рези­ны и пластмасс.

Все материалы, приготовленные для стерилизации дан­ным методом, предварительно упаковывают в пакеты из спе­циальной плотной бумаги, стерилизационные коробки (биксы), мешки из хлопчатобумажной ткани или другую специ­альную упаковку.

^ ВИДЫ УКЛАДКИ БИКСОВ:

1. Универсальная - в бикс помещается материал, предна­значенный для одной небольшой типичной операции (аппендэктомия, грыжесечение и т.д.).

2. Целенаправленная - в бикс закладывают необходимый набор инструментов, перевязочного материала и операцион­ного белья, предназначенного для конкретной операции

16

(пневмонэктомия, резекция желудка и т.д.).

3. Видовая - в бикс укладывается необходимый набор перевязочного материала или белья одного вида (бикс с хала­тами, бикс с салфетками и т.д.).

Перевязочный материал и операционное белье, подго­товленные к стерилизации, размещают в биксах в порядке, Принятом в данном лечебном учреждении. На дно бикса укла­дывают простыню, концы которой находятся снаружи. Пере­вязочный материал укладываю по секторам, неплотно, вертикально пачками или пакетами. Внутрь бикса помещают ин­дикаторы стерильности, края простыни заворачивают, крыш­ку бикса закрывают, оставляя открытыми отверстия для про­хождения пара. На крышке бикса прикрепляют бирку, на ко­торой указывается название материала, дата стерилизации, фамилия лица ее проводившего, и номер отделения.

Процесс стерилизации паром под давлением подразделяется на 4 периода:

- нагревание, - уравновешивание,

- уничтожение,

- охлаждение.

Период нагревания продолжается от момента включе­ния стерилизатора до достижения необходимого давления и температуры, согласно показаниям манометра, термометра.

Период уравновешивания - от момента достижения не­обходимой температуры до создания одинаковой температу­ры во всем стерилизуемом материале. Продолжительность это-го периода зависит от типа стерилизатора, вида и числа сте­рилизуемых изделий, режима стерилизации и определена ин­струкцией к используемому стерилизатору.

Период уничтожения - период гибели микроорганизмов вследствие воздействия горячего пара. Длительность его оп­ределяется по инструкции работы стерилизатора.

Период охлаждения продолжается от момента выключе­ния стерилизатора до снижения температуры и давления до уровня, позволяющего безопасно открыть его крышку. Обыч­но это 60 °С. При несоблюдении правил эксплуатации стери­лизатора относительно температурного режима, в периоде

17

охлаждения, в результате быстрого понижения температуры на стерилизуемом материале конденсируются капельки воды, что приводит к увлажнению белья. Влажное белье считается нестерильным! Сумма всех периодов стерилизации называет­ся стерилизационным циклом.

^ Горячевоздушный (сухожаровой) метод стерилизации -один из наиболее эффективных; Используется поток сухого горячего воздуха, при этом не происходит увлажнения стери­лизуемого материала, что является одним из его преимуществ. Однако он не лишен недостатков: сухой горячий воздух высу­шивает оболочку микробной клетки, тем самым повышая ее устойчивость к высоким температурам. Поэтому при исполь­зовании данного метода особенно важен контроль темпера­турного режима.

Применяются два режима горячевоздушной стерилиза­ции:

РЕЖИМ I: температура 180 °С при экспозиции 60 мин.

РЕЖИМ II: температура 160 °С при экспозиции 150 мин.

Горячевоздушный метод используется дня стерилизации термостойких материалов, в том числе предметов из коррозионно-нестойких металлов, стекла, фарфора, некоторых раз­новидностей термоустойчивой пластмассы (например сили­кона). Материалы и предметы, подлежащие стерилизации горячевоздушным методом, укладывают в биксы, металличес­кие контейнеры или пакеты из специальной бумаги. Нельзя подвергать стерилизации данным методом текстильные изде­лия из-за понижения их прочности или даже обугливания.

Весь рабочий цикл стерилизации продолжается 2—4 ч, в зависимости от типа стерилизационной камеры и количества стерилизуемого материала.

Последовательность работы воздушных стерилизаторов:

- загрузка материала при температуре 50—60 °С,

- нагревание,

- собственно стерилизация (от момента достижения до­лжной температуры до окончания времени экспозиции),

- охлаждение,

- разгрузка материала при температуре 20—30 °С.

Для контроля качества стерилизации паром под ­

давлением и горячевоздушным методом используют:

1. ^ Бактериологический метод (взятие посевов). Применяется для ретроспективной оценки бактериальной стерильности, из-за длительности проведения методики (3—5 дней и бо­лее).

2. Технические методы (^периодическая проверка фун­кционирования термометров и манометров).

3. ^ Термический контроль. Основан на свойстве ряда ве­ществ менять свой цвет и плавиться при строго определенной температуре.

Для контроля стерилизации паром под давлением ис­пользуются пробы с порошкообразными индикаторами, тем­пературная точка плавления которых выше 110 °С: антипи­рин (113 °С), антифибрин (115 °С), бензойная кислота (110—119 °С), мочевина (132 °С) и т.д.

Для контроля качества горячевоздушной стерилизации также используют пробы с порошкообразными индикатора­ми, температурная точка плавления которых 160 °С и выше: тиомочевина и сахароза (180 °С), янтарная кислота (180— 192 °С), пилокарпина гидрохлорид (200 °С), аскорбиновая кислота (187— 190 °С) и т.д.

Наиболее современным и достаточно эффективным ме­тодом контроля термических методов стерилизации является использование цветных индикаторных ленточек или полосок, пропитанных раствором специальных веществ, которые при достижении определенной температуры изменяют свой цвет.

^ Радиационный метод стерилизации. Метод основан на губительном воздействии различных видов ионизирующего излучения на микроорганизмы. Для стерилизации применя­ют: х-лучи, гамма-излучение, бета-частицы, нейтроны, протоны и другие виды ионизирующего излучения. Разница в вы­мываемых ими биологических изменениях почти незаметна. Гамма-лучи из всех видов излучений обладают наибольшей Проникающей способностью и поэтому используются чаще других. В качестве источников гамма-лучей применяют кобальт-60 и цезий-137. Бактерицидный эффект ионизирующе­го излучения является результатом воздействия на метаболические процессы в клетке. Каждый микроорганизм содержит

19

некоторое количество чувствительных "мишеней", разруше­ния одной из которых достаточно для нарушения жизнеспо­собности всего микроорганизма. Разрушение осуществляется путем возникновения возбуждения и распада молекул при воз­действии частиц ионизирующего излучения, что ведет к нару­шению хода обменных процессов, ферментативной деятель­ности клетки и образованию токсических аномальных про­дуктов обмена. При облучении прежде всего разрушается структура ДНК, в результате чего нарушается деятельность клеточного ядра. Важной особенностью ионизирующего из­лучения является то, что оно не вызывает немедленной гибели микробной клетки, хотя поражение является смертельным.

Стерилизующая доза ионизирующего излучения равна 2,5 Мрад. Этот вид стерилизации применяется в основном в медицинской промышленности для стерилизации одноразо­вых изделий в массовом количестве.

^ Метод стерилизации ультрафиолетовыми и инфракрас­ными лучами. Большое практическое значение имеет бактери­цидный эффект ультрафиолетовой радиации в пределах дли­ны волны 2000-4000 А. Максимум бактерицидного действия приходится на область 2540-2670 А. Бактерицидным действи­ем обладают только те лучи, которые абсорбируются протоп­лазмой. Механизм действия УФО близок к ионизирующему излучению, т.е. воздействие оказывается путем передачи до­полнительной энергии атомам, после чего последние перехо­дят в возбужденное состояние, при котором электроны могут оказаться выбитыми ю своей орбиты. Наиболее легко иони­зируются большие молекулы, по размерам равные молекуле протеина. Первоначальное действие заключается в том, что задерживается дыхание клетки и образование ДНК, в связи с чем наступает ее лизис. Основной реакцией, вероятно, являет­ся окисление сульфгидрильных групп, что вызывает инактивацию нуклеотидазы. Наибольшей устойчивостью к УФО об­ладают споры, т.к. их оболочка светонепроницаема. Дейст­вие УФО oгрaничивaeтcя только поверхностью облучаемого предмета, поэтому оно, несмотря на выраженный бактери­цидный эффект, используется в основном для дезинфекции воздуха помещений, а также для стерилизации некоторых

ин­струментов и материалов.

Инфракрасное излучение обладает более выраженным эффектом, чем УФО.

^ Газовый метод стерилизации. Стерилизация окисью эти­лена или смесью газов "ОБ" (окись этилена и бромистый ме­тил) производится в стационарном газовом стерилизаторе. Режим стерилизации зависит от характера стерилизуемого материала и определяется в соответствии с ОСТ 42-21-2—85 ,(табл. 4).

Таблица 4

^ Режимы стерилизации окисью этилена и смесью газов "ОБ"

Стерилизующий агент


Доза газа Т°С Экспо- Применяемость


мг кгс мм рт. зиция,


дм3 см2 ст. мин


Смесь газов "ОБ"(окись эти­лена с бромис­тым метилом в соотношении 1:25 повесу, соответственно)


2000 0,75 549 35 240 Оптика, кардио-стимуляторы


200 0,81 595 55 240 Полимерные материалы, резина, стекло, металл


2000 0,81 595 55 360 Пластмассовые магазины к сшивающим аппаратам


Окись этилена

Смесь газов "ОБ"


1200 0,68 498 не 960 Полимерные менее материалы, 18 стекло, металл

2000 0,70 510 не 960 Полимерные менее материалы, 18 стекло, металл



Примечание. Относительная влажность не менее 80%.

21

Стерилизация производится в упаковке из двухслойной полиэтиленовой пленки, пергамента, в мешочной пропитан­ной бумаге и мешочной влагопрочной бумаге. Изделия после предстерилизационной очистки высушивают и в разобран­ном виде упаковывают. По окончании стерилизации по дан­ной методике изделия можно использовать только после их выдержки в хорошо проветриваемом помещении при скорос­ти движения воздуха не менее 20 см/с в течение: 1 суток - для изделий из стекла и металла; 5-13 суток - для изделий и;

полимерных материалов (резины, пластмассы), имеющих крат­ковременный контакт с раневой поверхностью (до 30 мин); 14 суток - для всех изделий, имеющих длительный контакт (свы­ше 30 мин) со слизистыми оболочками, кровью, тканями че­ловеческого организма; 21 сутки - для изделий из полимерных материалов, имеющих длительный контакт (свыше 30 мин), при использовании в детской практике. После стерилизации материал в упаковке может сохранять свою стерильность от 1 года до 5 лет.

^ Метод стерилизации водными парами формальдегида (16% раствор). Подвергаются изделия из резины, стекла, полимер­ных материалов, металла. Изделия перед обработкой водны­ми парами формальдегида упаковывают в специальные паке­ты из полиэтилена или пергамента. Цикл стерилизации про­водится в параформалиновом стерилизаторе при температуре 75 °С и относительной влажности 96° в течение 300 мин. Для нейтрализации формалина применяется распыление 23-25° о раствора аммиака в количестве 90 см3 в течение 60 мин. После стерилизации изделия в упаковке сохраняют свою стериль­ность в течение 5 лет.

Реже используется стерилизация сухими парами формаль­дегида. Цистоскопы, бронхоскопы, ларингоскопы и другие предметы размещают в подвешенном состоянии, либо на пол­ках в специальной камере с притертой крышкой. На дно ка­меры помещают таблетки формалина, обладающего большой способностью к испарению. Стерилизация происходит при температуре не менее 20 °С в течение 24 ч. Для поддержания низкой влажности в камеру помещают мешочек с кристалли­ческим хлоридом кальция. После стерилизации предметы или

22

приборы промывают стерильной дистиллированной водой.

^ Метод стерилизации растворами химических препаратов. Для химической стерилизации предметов из полимерных ма­териалов, резины и стекла, а также коррозионно-стойкого металла используют перекись водорода, соединения на осно­ве перекиси водорода, альдегиды. ОСТ 42-21-2 85 предус­матривает использование двух химических препаратов: пере­кись водорода (6% раствор) и дезоксон-1 (1% раствор). Сте­рилизация осуществляется в закрытых емкостях из стекла, пластмассы, а также эмалированной посуде при условии пол­ного погружения материала в раствор. При использовании 6% раствора перекиси водорода, при комнатной температуре, время экспозиции составляет 360 мин, при температуре 50 °С - 180 мин. Температура раствора в процессе стерилизации не поддерживается. 1% раствор дезоксон-1, при комнатной тем­пературе, стерилизует материал в течение 45 мин. Раствор перекиси водорода может быть использован в течение 7 суток со дня приготовления, а дезоксон-1 - в течение 24 ч. Повтор­ное использование растворов запрещено!

После стерилизации материал, перед его употреблением, дважды прополаскивают в стерильной дистиллированной воде. Стерилизация осуществляется в условиях, соответству­ющих требованиям к "чистым операционным". Первому? в виде 2,4-4,8% раствора может использоваться для стерилиза­ции различных изделий хирургического назначения (шовный материал, инструментарий, дренажные трубки и т.д.) и даже эндоскопической аппаратуры. Однако существующими нор­мативными актами его применение не оговорено.

Химическая стерилизация является наиболее оптималь­ной для обработки режущего инструментария, выполненного из коррозионно-стойкого металла.